1. Trang chủ
  2. » Luận Văn - Báo Cáo

Nghiên cứu đặc điểm bệnh lý chủ yếu ở nhóm bệnh phổi của lợn siêu nạc ( luận văn thạc sĩ chuyên ngành thú y)

86 10 0

Đang tải... (xem toàn văn)

Tài liệu hạn chế xem trước, để xem đầy đủ mời bạn chọn Tải xuống

THÔNG TIN TÀI LIỆU

Thông tin cơ bản

Định dạng
Số trang 86
Dung lượng 3,46 MB

Cấu trúc

  • Phần 1. Mở đầu (15)
    • 1.1. Tính cấp thiết của đề tài (15)
    • 1.2. Mục tiêu nghiên cứu (15)
    • 1.3. Phạm vi nghiên cứu (16)
  • Phần 2. Tổng quan tài liệu (17)
    • 2.1. Tình hình nghiên cứu bệnh ở đường hô hấp (17)
      • 2.1.1. Sơ lược tình hình bệnh hô hấp (0)
      • 2.1.2. Nguyên nhân gây bệnh đường hô hấp (17)
    • 2.2. Cấu tạo và chức năng của phổi (25)
    • 2.3. Sơ lược một số bệnh phổi ở lợn (0)
      • 2.3.1. Bệnh tụ huyết trùng lợn (Pasteurellosis suum) (27)
      • 2.3.2. Bệnh suyễn lợn (Swine Mycoplasmosis) hay bệnh viêm phổi đi ̣a phương (28)
      • 2.3.3. Bệnh viêm màng phổi và phổi ở lợn (Swine pleuropneumonia) (29)
      • 2.3.4. Hội chứng rối loạn hô hấp và sinh sản ở lợn (Porcine Respiratory (30)
      • 2.3.5. Bệnh viêm teo mũi truyền nhiễm ở lợn (Atrophic rhinitis) (31)
      • 2.3.6. Bệnh cúm lợn (32)
      • 2.3.7. Bệnh viêm đường hô hấp do Heamophilus (33)
  • Phần 3. Vật liệu và phương pháp nghiên cứu (34)
    • 3.1. Thời gian nghiên cứu (34)
    • 3.2. Địa điểm nghiên cứu (34)
    • 3.3. Đối tượng nghiên cứu (0)
    • 3.4. Nội dung và phương pháp nghiên cứu (34)
  • Phần 4. Kết quả và thảo luận (39)
    • 4.1. Kết quả nghiên cứu tỷ lệ mắc bệnh phổi của lợn tại 4 trang trại (39)
    • 4.2. Kết quả so sánh tỷ lệ mắc nhóm bệnh phổi của lợn tại 4 trang trại (50)
    • 4.3. Kết quả chẩn đoán các bệnh phổi ở lợn siêu nạc tại 4 trang trại (54)
    • 4.4. Kết quả tổng hợp tỷ lệ mắc các bệnh phổi của lợn tại 4 trang trại (63)
    • 4.5. Kết quả nghiên cứu triệu chứng, bệnh tích chủ yếu của lợn mắc nhóm bệnh phổi (63)
      • 4.5.1. Kết quả nghiên cứu triệu chứng của lợn mắc bệnh (63)
      • 4.5.2. Kết quả nghiên cứu bệnh tích đại thể của lợn mắc bệnh (65)
    • 4.6. Kết quả nghiên cứu bệnh tích vi thể ở phổi của lợn mắc bệnh (71)
    • 4.7. Kết quả một số chỉ tiêu huyết học của lợn mắc bệnh (76)
      • 4.7.1. Kết quả khảo sát một số chỉ tiêu hồng cầu của lợn bệnh (76)
      • 4.7.2. Kết quả nghiên cứu một số chỉ tiêu bạch cầu của lợn bệnh (80)
  • Phần 5. Kết luận và kiến nghị (83)
    • 5.1. Kết luận (83)
    • 5.2. Kiến nghị (83)
  • Tài liệu tham khảo (84)

Nội dung

Vật liệu và phương pháp nghiên cứu

Thời gian nghiên cứu

Nghıên cứu được tıến hành từ 9/2018 đến 04/2019

Địa điểm nghiên cứu

- Địa điểm nghiên cứu: Phòng thí nghiệm bộ môn Bệnh lý khoa Thú Y, Học Viện Nông nghiệp Việt Nam

- Một số cơ sở chăn nuôi lợn trên địa bàn tỉnh Hưng Yên

3.3 ĐỐI TƢỢNG NGHIÊN CỨU Đối tượng nghiên cứu: Lợn siêu nạc các lứa tuổi, gồm các giống lợn: Landrace, Yorshire mắc nhóm bệnh phổi tại Văn Giang_ Hưng Yên.

3.4 NỘI DUNG VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU

- Khảo sát tỷ lệ mắc bệnh phổi ở lợn siêu nạc

- Tổng hợp và so sánh đặc điểm bệnh lý chủ yếu nhóm bệnh phổi ở lợn siêu nạc

- Khảo sát một số chỉ tiêu huyết học của lợn siêu nạc mắc bệnh phổi

3.4.2.1 Phương pháp xác định tỷ lệ lợn mắc bệnh phổi

Để xác định lợn mắc bệnh phổi, cần dựa vào triệu chứng lâm sàng và các bệnh tích đặc trưng Việc theo dõi thường xuyên, quan sát từng ô chuồng và kiểm tra từng cá thể lợn là rất quan trọng nhằm phát hiện lợn bị bệnh phổi hoặc các bệnh lý khác.

Để nhận biết lợn mắc bệnh phổi, hãy chú ý đến các dấu hiệu như: con vật ủ rũ, mệt mỏi, kém ăn, da xanh, khịt mũi, thở khò khè, khó thở, hắt hơi và ho khan.

Sau khi ghi chép cẩn thận vào nhật ký về số lượng tai, số lượng nái, nhóm tuổi và ô chuồng vào ngày tháng có bệnh, chúng ta có thể dự đoán các nguyên nhân gây bệnh Điều này giúp xác định những vấn đề cần lưu ý khi kết thúc thí nghiệm.

Số lợn con mắc bệnh phổi

Tỷ lệ mắc bệnh phổi = x 100

Xác lợn chết được mổ khám theo tiêu chuẩn trong TCVN 8402: 2010 (Bộ khoa học & Công nghệ, 2010)

Mổ khám lợn mắc bệnh phổi là cần thiết để xác định các biến đổi đại thể của các cơ quan và tổ chức Quy trình bắt đầu bằng việc cố định lợn bệnh và lấy máu từ tĩnh mạch cổ Sau đó, tiến hành lột da để bộc lộ xoang ngực và bụng, tách các cơ quan nội tạng để quan sát và chụp ảnh Các mẫu như phổi, tim, gan, lách, thận, ruột và hạch được thu thập cho các mục đích nghiên cứu khác nhau, trong đó một số mẫu được bảo quản trong dung dịch formol 10% ít nhất một thời gian nhất định.

1 tuần) để làm tiêu bản vi thể (Cao Xuân Ngọc, 1997)

Phương pháp lấy bệnh phẩm

Sử dụng kéo để cắt lấy các bộ phận có dấu hiệu bệnh lý đặc trưng ở lợn mắc bệnh phổi, như mẫu phổi, gan và ruột, với kích thước khoảng 3cm Sau đó, cho các mẫu này vào lọ chứa dung dịch formol 10%.

3.4.2.3 Phương pháp làm và nhuộm tiêu bản vi thể

Các mẫu bệnh phẩm có biến đổi đại thể được ngâm trong dung dịch formol 10% để tạo tiêu bản, từ đó xác định bệnh tích vi thể chủ yếu của bệnh.

Tiêu bản vi thể được thực hiện theo phương pháp của Prophet (1992) bao gồm các bước cơ bản sau: lấy mẫu, khử nước và làm trong, tẩm parafin, đúc block, cắt dán mảnh, nhuộm Hematoxilin và Eosin, sau đó gắn lamen, dán nhãn và đọc kết quả bằng kính hiển vi.

* Phương pháp làm tiêu bản bệnh lý

Các mẫu bệnh phẩm có biến đổi đại thể được ngâm trong formol 10% để làm tiêu bản vi thể Việc làm tiêu bản là cần thiết để xác định bệnh tích vi thể chủ yếu Quy trình làm tiêu bản vi thể bao gồm tẩm đúc bằng paraffin và nhuộm Haematoxilin – Eosin (HE).

Để kiểm tra bệnh ở lợn, chúng tôi lấy mẫu từ mỗi cơ quan với hai miếng bệnh phẩm và đúc thành hai block Mỗi block sẽ được cắt và nhuộm để tạo tiêu bản, từ đó chọn ra tiêu bản đẹp nhất Sau khi soi dưới kính hiển vi, nếu có hai tiêu bản trong một block đều cho thấy bệnh tích vi thể, thì được coi là dương tính.

Các bước của quá trình làm tiêu bản vi thể như sau:

Để tiến hành thí nghiệm, cần chuẩn bị đầy đủ dụng cụ và hóa chất như lọ formol 10%, dao kéo, pank kẹp, cốc đựng hóa chất, phiến kính, máy đúc block, khuôn đúc, tủ ấm 37 độ C, máy cắt mảnh microtom, nước ấm từ 48 đến 52 độ C, xylem, paraffin, cùng với thuốc nhuộm hematoxylin và eosin.

Lấy bệnh phẩm: bệnh phẩm là dạ dày, ruột, tim, gan, thận, lách…

Ngâm miếng tổ chức vào dung dịch formol 10% (Chú ý thể tích formol phải gấp 10 lần bệnh phẩm và bệnh phẩm phải ngập trong formol)

Tiến hành lần lượt các bước sau:

 Rửa formol: Lấy tổ chức ra khỏi bình formol 10%, cắt thành từng miếng có chiều dài, rộng khoảng 4-5mm Sau đó rửa dưới vòi nước chảy nhẹ trọng 24h

 Khử nước: cho qua hệ thống gồm 3 lọ cồn

Mục đích: khử nước ra khỏi tổ chức

 Khử cồn: cho qua hệ thống gồm 3 lọ xylen

Mục đích: khử hết cồn ra khỏi rổ chức

Yêu cầu: khi nào miếng tổ chức trong như cục thạch là được, nếu để quá lâu tổ chức sẽ giòn, dễ vỡ và khó cắt

 Khử Xylen: Cho qua hệ thống paraffin đã ổn định, đặc chắc, đồng nhất, không lẫn tạp chất, không bọt, có từ 3 – 5% sáp ong đã nấu, gồm 3 lọ

Paraffin II: 6h trong tủ ấm 56 o C

Paraffin III: 12h trong tủ ấm 56 o C

Mục đích của quá trình khử xylen trong tổ chức là để chỉ còn lại paraffin thấm trong các kẽ mô bào Nếu nhiệt độ vượt quá 56 độ C, tổ chức sẽ trở nên giòn, dễ vỡ và khó cắt Việc đúc block nhằm đưa mẫu bệnh phẩm vào trong khối paraffin để tạo thành một thể thống nhất.

Chuẩn bị: máy đúc block, paraffin

Phương pháp thực hiện bao gồm việc đặt miếng bệnh phẩm nằm ngang vào giữa khuôn block, sau đó nhanh chóng đổ paraffin lỏng vào khuôn Sau khi đổ, chuyển khuôn đã đúc sang bàn lạnh của máy để làm đông Đợi cho đến khi block đông cứng hoàn toàn là hoàn tất quá trình.

Cắt dán mảnh và cố định tiêu bản

Chuẩn bị: máy cắt, dao cắt, nước ấm 48 – 52 o C, phiến kính, pank kẹp…

Cắt mảnh: bằng mỏy cắt microtom, với độ dài 3 – 5 àm, sao cho mảnh cắt không rách, nát ở phần tổ chức

Để xử lý mảnh cắt, hãy dùng pank kẹp mảnh và đặt vào nước lạnh, nhẹ nhàng dàn đều sao cho mặt dưới của mảnh cắt được ướt hoàn toàn Sau đó, sử dụng phiến kính để hớt mảnh cắt và chuyển sang nước ấm.

48 - 52 o C rồi vớt mảnh cắt sao cho vị trí mảnh cắt ở 1/3 phiến kính Sau đó để ở tủ ấm 37 o C trong vòng 24h

Nhuộm tiêu bản: Các bước tiến hành:

 Khử paraffin: Cho tiêu bản qua hệ thống xylen gồm 3 lọ:

Lưu ý: có thể để tiêu bản cần nhuộm vào xylen từ sáng, đến chiều nhuộm để tiêu bản sạch hết paraffin

 Khử xylen: cho tiêu bản qua hệ thống cồn gồm 3 lọ:

 Khử cồn: cho dưới vòi nước chảy 10 phút

Nhỏ haematoxylin ngập tiêu bản trong 5 phút, rửa nước, lau sạch quanh tiêu bản, kiểm tra màu sắc thấy tiêu bản xanh tím là được

Sau đó cho tiêu bản rửa nước 5 phút loại bỏ hết haematoxylin thừa:

 Nhuộm Eosin (nhuộm bào tương): Nhỏ eosin ngập tiêu bản khoảng 5 –

10 phút, rửa nước chảy cho hết eosin thừa

 Tẩy nước: Cho tiêu bản qua 3 lọ cồn 100 o mỗi lọ 1 phút

 Tẩy cồn làm trong tiêu bản:

Cho tiêu bản đi qua 3 lọ xylen, mỗi lọ 3 – 5 phút

Gắn Baume canada: Nhỏ một giọt Baume Canada lên lamen rồi gắn nhanh lên tiêu bản khi vẫn còn xylen trên tiêu bản

Kiểm tra tiêu bản trên kính hiển vi quang học với vật kính 10, cần chú ý đến màu sắc và độ trong suốt Nếu tiêu bản hiển thị màu xanh tím và bào tương có màu đỏ tươi, đồng thời tiêu bản trong sáng, không có nước hay bọt khí, thì tiêu bản đạt yêu cầu.

3.4.2.4 Phương pháp xử lý số liệu

Các số liệu thu được được xử lý bằng phần mềm microsoft excel 2010 và phần mềm thống kê EpiTools Epidemiological Calculators (Ausvet, Australia)

Sau khi thu thập số liệu, tổng kết sơ bộ được xử lý bằng phương pháp thống kê sinh học với các tham số và công thức sau

- Sai số của số trung bình: m x X : số trung bình Trong đó: xi: số hạng thứ i n: dung lượng mẫu.

Nội dung và phương pháp nghiên cứu

- Khảo sát tỷ lệ mắc bệnh phổi ở lợn siêu nạc

- Tổng hợp và so sánh đặc điểm bệnh lý chủ yếu nhóm bệnh phổi ở lợn siêu nạc

- Khảo sát một số chỉ tiêu huyết học của lợn siêu nạc mắc bệnh phổi

3.4.2.1 Phương pháp xác định tỷ lệ lợn mắc bệnh phổi

Để xác định lợn mắc bệnh phổi, cần dựa vào triệu chứng lâm sàng và bệnh tích đặc trưng Việc theo dõi thường xuyên, quan sát từng ô chuồng và kiểm tra từng cá thể lợn là rất quan trọng nhằm phát hiện sớm các trường hợp mắc bệnh phổi hoặc các bệnh khác.

Để nhận biết lợn mắc bệnh phổi, bạn cần chú ý đến những dấu hiệu như con vật ủ rũ, mệt mỏi, kém ăn, da xanh, khịt mũi, thở khò khè, khó thở, hắt hơi và ho khan.

Sau khi theo dõi và ghi chép vào nhật ký về số lượng tai, số lượng nái, nhóm tuổi và ô chuồng cùng với ngày tháng xảy ra bệnh, chúng ta có thể dự đoán các nguyên nhân gây bệnh Điều này giúp xác định những vấn đề cần lưu ý khi kết thúc thí nghiệm.

Số lợn con mắc bệnh phổi

Tỷ lệ mắc bệnh phổi = x 100

Xác lợn chết được mổ khám theo tiêu chuẩn trong TCVN 8402: 2010 (Bộ khoa học & Công nghệ, 2010)

Mổ khám lợn mắc bệnh phổi nhằm xác định biến đổi đại thể của các cơ quan, tổ chức có triệu chứng lâm sàng Quy trình bắt đầu bằng việc cố định lợn bệnh và lấy máu từ vịnh tĩnh mạch cổ Sau đó, tiến hành lột da để bộc lộ xoang ngực và bụng, tách các cơ quan nội tạng để quan sát và chụp ảnh Mẫu các cơ quan như phổi, tim, gan, lách, thận, ruột, hạch được thu thập cho các mục đích nghiên cứu khác nhau, một số mẫu được bảo quản trong formol 10% ít nhất.

1 tuần) để làm tiêu bản vi thể (Cao Xuân Ngọc, 1997)

Phương pháp lấy bệnh phẩm

Sử dụng kéo để cắt một số bộ phận có dấu hiệu bệnh lý đặc trưng ở cơ quan lợn mắc bệnh phổi, như mẫu phổi, gan, ruột, với kích thước khoảng 3cm, sau đó cho vào lọ chứa formol 10%.

3.4.2.3 Phương pháp làm và nhuộm tiêu bản vi thể

Mẫu bệnh phẩm có biến đổi đại thể được ngâm trong dung dịch formol 10% để tạo tiêu bản, giúp xác định các bệnh tích vi thể chủ yếu của bệnh.

Tiêu bản vi thể được thực hiện theo phương pháp của Prophet, E.B (1992) bao gồm các bước sau: lấy mẫu, khử nước và làm trong, tẩm parafin, đúc block, cắt dán mảnh, nhuộm Hematoxilin và Eosin, sau đó gắn lamen, dán nhãn và đọc kết quả bằng kính hiển vi.

* Phương pháp làm tiêu bản bệnh lý

Mẫu bệnh phẩm có biến đổi đại thể được ngâm trong formol 10% để làm tiêu bản vi thể Việc làm tiêu bản là cần thiết để xác định bệnh tích vi thể chủ yếu Quy trình làm tiêu bản vi thể bao gồm tẩm đúc bằng paraffin và nhuộm Haematoxilin – Eosin (HE).

Để chẩn đoán bệnh ở lợn, chúng tôi lấy mẫu từ mỗi cơ quan, mỗi mẫu gồm hai miếng bệnh phẩm được đúc thành hai block Sau đó, chúng tôi cắt và nhuộm tiêu bản từ mỗi block, chọn ra những tiêu bản đẹp nhất để soi dưới kính hiển vi Kết quả bệnh tích vi thể được đọc và nếu cả hai tiêu bản trong một block đều có bệnh tích, block đó sẽ được coi là dương tính.

Các bước của quá trình làm tiêu bản vi thể như sau:

Để tiến hành thí nghiệm, cần chuẩn bị đầy đủ dụng cụ và hóa chất như: lọ formol 10%, dao kéo, pank kẹp, cốc đựng hóa chất, phiến kính, máy đúc block, khuôn đúc, tủ ấm 37 o C, máy cắt mảnh microtom, nước ấm 48 – 52 o C, xylem, paraffin, cùng với thuốc nhuộm hematoxylin và eosin.

Lấy bệnh phẩm: bệnh phẩm là dạ dày, ruột, tim, gan, thận, lách…

Ngâm miếng tổ chức vào dung dịch formol 10% (Chú ý thể tích formol phải gấp 10 lần bệnh phẩm và bệnh phẩm phải ngập trong formol)

Tiến hành lần lượt các bước sau:

 Rửa formol: Lấy tổ chức ra khỏi bình formol 10%, cắt thành từng miếng có chiều dài, rộng khoảng 4-5mm Sau đó rửa dưới vòi nước chảy nhẹ trọng 24h

 Khử nước: cho qua hệ thống gồm 3 lọ cồn

Mục đích: khử nước ra khỏi tổ chức

 Khử cồn: cho qua hệ thống gồm 3 lọ xylen

Mục đích: khử hết cồn ra khỏi rổ chức

Yêu cầu: khi nào miếng tổ chức trong như cục thạch là được, nếu để quá lâu tổ chức sẽ giòn, dễ vỡ và khó cắt

 Khử Xylen: Cho qua hệ thống paraffin đã ổn định, đặc chắc, đồng nhất, không lẫn tạp chất, không bọt, có từ 3 – 5% sáp ong đã nấu, gồm 3 lọ

Paraffin II: 6h trong tủ ấm 56 o C

Paraffin III: 12h trong tủ ấm 56 o C

Mục đích của quá trình khử xylen trong tổ chức là để chỉ còn lại paraffin thấm trong các kẽ mô bào, giúp bảo quản mẫu bệnh phẩm Tuy nhiên, nếu nhiệt độ vượt quá 56 độ C, tổ chức sẽ trở nên giòn, dễ vỡ và khó cắt Do đó, việc đúc block nhằm đưa mẫu bệnh phẩm vào khối paraffin để tạo thành một thể thống nhất là rất quan trọng.

Chuẩn bị: máy đúc block, paraffin

Để tiến hành, đặt miếng bệnh phẩm nằm ngang ở giữa khuôn block, sau đó nhanh chóng đổ paraffin lỏng vào khuôn Tiếp theo, chuyển khuôn đã đúc sang bàn lạnh của máy đúc khuôn block và để nguội cho đến khi block đông cứng hoàn toàn.

Cắt dán mảnh và cố định tiêu bản

Chuẩn bị: máy cắt, dao cắt, nước ấm 48 – 52 o C, phiến kính, pank kẹp…

Cắt mảnh: bằng mỏy cắt microtom, với độ dài 3 – 5 àm, sao cho mảnh cắt không rách, nát ở phần tổ chức

Để xử lý mảnh cắt, hãy sử dụng pank kẹp và đặt mảnh cắt vào nước lạnh, dàn đều để mặt dưới của mảnh cắt ướt hoàn toàn Sau đó, dùng phiến kính để hớt mảnh cắt và chuyển sang nước ấm.

48 - 52 o C rồi vớt mảnh cắt sao cho vị trí mảnh cắt ở 1/3 phiến kính Sau đó để ở tủ ấm 37 o C trong vòng 24h

Nhuộm tiêu bản: Các bước tiến hành:

 Khử paraffin: Cho tiêu bản qua hệ thống xylen gồm 3 lọ:

Lưu ý: có thể để tiêu bản cần nhuộm vào xylen từ sáng, đến chiều nhuộm để tiêu bản sạch hết paraffin

 Khử xylen: cho tiêu bản qua hệ thống cồn gồm 3 lọ:

 Khử cồn: cho dưới vòi nước chảy 10 phút

Nhỏ haematoxylin ngập tiêu bản trong 5 phút, rửa nước, lau sạch quanh tiêu bản, kiểm tra màu sắc thấy tiêu bản xanh tím là được

Sau đó cho tiêu bản rửa nước 5 phút loại bỏ hết haematoxylin thừa:

 Nhuộm Eosin (nhuộm bào tương): Nhỏ eosin ngập tiêu bản khoảng 5 –

10 phút, rửa nước chảy cho hết eosin thừa

 Tẩy nước: Cho tiêu bản qua 3 lọ cồn 100 o mỗi lọ 1 phút

 Tẩy cồn làm trong tiêu bản:

Cho tiêu bản đi qua 3 lọ xylen, mỗi lọ 3 – 5 phút

Gắn Baume canada: Nhỏ một giọt Baume Canada lên lamen rồi gắn nhanh lên tiêu bản khi vẫn còn xylen trên tiêu bản

Kiểm tra tiêu bản dưới kính hiển vi quang học với vật kính 10 Nếu quan sát thấy màu xanh tím và bào tương có màu đỏ tươi, tiêu bản sẽ trong sáng Đảm bảo không có nước và bọt khí xuất hiện.

3.4.2.4 Phương pháp xử lý số liệu

Các số liệu thu được được xử lý bằng phần mềm microsoft excel 2010 và phần mềm thống kê EpiTools Epidemiological Calculators (Ausvet, Australia)

Sau khi thu thập số liệu, tổng kết sơ bộ được xử lý bằng phương pháp thống kê sinh học với các tham số và công thức sau

- Sai số của số trung bình: m x X : số trung bình Trong đó: xi: số hạng thứ i n: dung lượng mẫu.

Ngày đăng: 18/07/2021, 22:05

Nguồn tham khảo

Tài liệu tham khảo Loại Chi tiết
16. Aalund O. et al. (1976). Lung lesions at slaughter: associations to factors in the pig herd. Nordisk veterinaermedicin. 28(10). pp. 487-495 Sách, tạp chí
Tiêu đề: et al
Tác giả: Aalund O. et al
Năm: 1976
20. Craf et al. (1974). Statiscal observations involving weight, Hemoglobin and proportion of white blood cells in pig Sách, tạp chí
Tiêu đề: et al
Tác giả: Craf et al
Năm: 1974
21. Curtis S.E. et al. (1975). Effects of aerial ammonia, hydrogen sulfide and swine- house dust on rate of gain and respiratory-tract structure in swine. Journal of animal science. 41(3). pp. 735-739 Sách, tạp chí
Tiêu đề: et al
Tác giả: Curtis S.E. et al
Năm: 1975
22. Donaldson A., et al. (1970). Further investigations on the airborne excretion of foot-and-mouth disease virus. Epidemiology & Infection. 68(4). pp. 557-564 Sách, tạp chí
Tiêu đề: et al
Tác giả: Donaldson A., et al
Năm: 1970
33. Mousing J. et al. (1990). Chronic pleuritis in pigs for slaughter: an epidemiological study of infectious and rearing system-related risk factors. Preventive Veterinary Medicine, 1990. 9(2). pp. 107-119 Sách, tạp chí
Tiêu đề: et al
Tác giả: Mousing J. et al
Năm: 1990
39. Tielen M. et al. (1978). Conditions of management and the construction of piggeries on pig-fattening farms as factors in the incidence of diseases of the lung and liver in slaughtered pigs (author's transl). Tijdschrift voor diergeneeskunde.103(21). pp. 1155-1165 Sách, tạp chí
Tiêu đề: et al
Tác giả: Tielen M. et al
Năm: 1978
1. Bộ Khoa học & Công nghệ (2010). Tiêu chuẩn TCVN 8402:2010- Bệnh động vật, Quy trình mổ khám, ban hành theo quyết định 2339/QĐ-BKHCN Khác
2. Bùi Quang Anh (2008). Hội chứng rối loạn sinh sản và hô hấp ở lợn (PRRS). Nhà xuất bản Nông nghiệp. tr. 7-21 Khác
3. Cao Xuân Ngọc (1997) Giải phẫu bệnh đại cương thú y. Nhà xuất bản Nông nghiệp, Hà Nội Khác
4. Cù Hữu Phú (2005). Xác định nguyên nhân gây bệnh đường hô hấp của lợn nuôi tại một số tỉnh phía Bắc. Tạp chí KHKT thú y. XII 4. tr.23 32 Khác
5. Hồ Văn Nam (1982). Giáo trình chẩn đoán bệnh không lây ở gia súc. Nhà xuất bản Nông nghiệp Hà Nội Khác
6. Hồ Văn Nam, Nguyễn Thị Đào Nguyên và Phạm Ngọc Thạch (1997). Giáo trình chẩn đoán lâm sàng Thú y. NXB Nông nghiệp, Hà Nội Khác
7. Nguyễn Như Thanh, Nguyễn Bá Hiên và Trần Thị Lan Hương (1997). Vi sinh vật thú y. NXB Nông Nghiệp Hà Nội Khác
8. Nguyễn Xuân Tịnh (1996). Sinh lý học gia súc. Hà Nội. NXB Nông nghiệp, Hà Nội Khác
9. Phạm Hồng Sơn (2004). Tình hình bệnh dịch tả lợn qua chẩn đoán huyết thanh học tại Thừa Thiên Huế. Khoa học kỹ thuật thú y. tr. 11-18 Khác
10. Phạm Sĩ Lăng và Phan Địch Lân (1995). Cẩm nang bệnh lợn. NXB Nông Nghiệp, Hà Nội Khác
11. Phạm Sĩ Lăng and Trương Văn Dung (2002). Một số bệnh mới do vi khuẩn và Mycoplasma ở gia súc-gia cầm nhập nội và biện pháp phòng trị. NXB Nông nghiệp, Hà Nội Khác
12. Phạm Sỹ Lăng, Phan Địch Lân và Trương Văn Dung (1997). Bệnh phổ biến ở lợn và biện pháp phòng trị. NXB Nông nghiệp, Hà Nội Khác
13. Phan Kim Thanh, Lý Thị Liên Khai và Huỳnh Văn Thẩm (2018). Khảo sát bệnh viêm phổi, màng phổi do vi khuẩn Actinobacillus pleuropneumoniae trên heo tại tỉnh Bến Tre. Tạp chí Khoa học Trường Đại học Cần Thơ. tr.54-63 Khác
14. Trịnh Thị Thơ Thơ, Phạm Sỹ Lăng và Nguyễn Đăng Khải (2004). Sổ tay chẩn đoán và phòng trị bệnh cho vật nuôi. NXB Nghệ An Khác

TỪ KHÓA LIÊN QUAN

TÀI LIỆU CÙNG NGƯỜI DÙNG

  • Đang cập nhật ...

TÀI LIỆU LIÊN QUAN